Técnicas de extracción y su selección según el compuesto bioactivo de interés en residuos de frutas y verduras. Una revisión.
Palabras clave:
Campo eléctrico pulsado, extracción asistida por enzimas, extracción asistida por microondas, extracción asistida por ultrasonido, extracción con fluidos supercríticos, fibra, fitoquímicos, polifenolesBarra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
A nivel mundial, una quinta parte de todos los alimentos, principalmente frutas y verduras, disponibles para el consumo humano se pierden, y/o desperdician pese a que sus residuos son ricos en compuestos bioactivos de interés para diferentes industrias. Esta revisión busca facilitar la comprensión y selección de la técnica de extracción más adecuada, acorde al compuesto bioactivo de interés para el aprovechamien-to de estos residuos, utilizando fuentes secundarias consultadas en Scopus y Web of Science (WoS), seleccionadas y organizadas con la herramienta Bibliometrix de R Studio. Los residuos de frutas y verduras son ricos en compuestos bioactivos que se extraen utilizando tecnologías convencionales o emergentes. Estas últimas (ultrasonido, microondas, fluidos supercríticos, campo eléctrico y enzimas), superan a las con-vencionales (Soxhlet, hidrodestilación y maceración) porque presentan métodos de extracción más eficientes, económicos y sostenibles. Para seleccionar la técnica de extracción más adecuada se debe considerar factores como: naturaleza del residuo, características del compuesto bioactivo, pureza, termosensibilidad y equilibrio entre eficiencia, tiempo y consumo de solventes. La investigación continua y la integración de tecnologías avanzadas serán fundamentales para optimizar estos procesos y maximizar el aprovechamiento de los residuos.
1. ONU. Con 783 millones de personas hambrientas, una quinta parte de los alimentos en todo el mundo van a la basura [Internet]. 2024 [consultado 14 Feb 2025]. Disponible en: https://news.un.org/es/story/2024/03/1528666
2. El Congreso de la República de Colombia. Ley 1990 [Internet]. Colombia: El congreso de la República de Colombia; 2019. Disponible en: https://dapre.presidencia.gov.co/normativa/normativa/LEY%201990%20DEL%2002%20DE%20AGOSTO%20DE%202019.pdf
3. Herrera MF. Colombia: 9 millones de toneladas de alimentos se desperdician al año [Internet]. 2024 [consultado 14 Feb 2025]. Disponible en: https://www.rcnradio.com/colombia/mas-de-9-millones-de-toneladas-de-alimentos-se-desperdician-al-ano-en-colombia
4. Monterrosa H. Colombia podría aprovechar 40% de las toneladas de residuos que genera anualmente. La República [Internet]. Bogotá: La República; 2019 Ene 10 [consultado 17 Abr 2023]. Disponible en: https://www.larepublica.co/responsabilidad-social/colombia-podria-aprovechar-cerca-de-40-de-los-11-6-millones-de-toneladas-de-residuos-que-genera-al-ano-2813141
5. Pulido QL, Núñez AA. Evaluación de estrategias de aprovechamiento de residuos orgánicos en Colombia durante el periodo 2006-2020 [Internet]. Bucaramanga: Unidades Tecnológicas de Santander; 2021. Disponible en: http://repositorio.uts.edu.co:8080/xmlui/handle/123456789/7354
6. Gobierno de Colombia. Bioeconomía para una Colombia Potencia viva y diversa: Hacia una sociedad impulsada por el conocimiento [Internet]. Bogotá: Gobierno de Colombia. Bogotá; 2020. p. 1–48. Disponible en: https://minciencias.gov.co/sites/default/files/upload/paginas/bioeconomia_para_un_crecimiento_sostenible-qm_print.pdf
7. Gobierno de Colombia. Misión internacional de sabios para el avance de la ciencia, la tecnología y la innovación. Pacto por la ciencia, la tecnología y la innovación: un sistema para construir el conocimiento del futuro [Internet]. Bogotá: Misión de Sabios - Colombia; 2019. Disponible en: https://minciencias.gov.co/sites/default/files/libro_mision_de_sabios_digital_1_2_0.pdf
8. Bacca AJ, Vásquez A, Rodríguez I, España J. El potencial de los compuestos bioactivos de residuos de frutas y verduras en la industria alimentaria: una revisión. Rev Ciencias [Internet]. 2024 Ene 16 [consultado 14 Feb 2025]; 27(2): 14046–14046. Disponible en: https://doi.org/10.25100/rc.v27i2.14046 DOI: https://doi.org/10.25100/rc.v27i2.14046
9. Ancos IJ, Fernández J, Moreno CS. Functional compounds in fresh-cut and ready-to-eat products. Rev Iberoam Tecnol Postcosecha [Internet]. 2016 [consultado 22 Abr 2023]; 17(2): 130–148. Disponible en: https://www.redalyc.org/journal/813/81349041002/html/
10. Kainat S, Arshad MS, Khalid W, Zubair Khalid M, Koraqi H, Afzal MF, et al. Sustainable novel extraction of bioactive compounds from fruits and vegetables waste for functional foods: a review. Int J Food Prop [Internet]. 2022 Dic 31 [consultado 12 Nov 2023]; 25(1): 2457–2476. Disponible en: https://doi.org/10.1080/10942912.2022.2144884 DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2022.2144884
11. Chamorro F, Carpena M, Fraga-Corral M, Echave J, Riaz Rajoka MS, Barba FJ, et al. Valorization of kiwi agricultural waste and industry by-products by recovering bioactive compounds and applications as food additives: a circular economy model. Food Chem [Internet]. 2022 Feb 15 [consultado 21 Feb 2024];370:131315. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.131315 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.131315
12. Rafiq S, Kaul R, Sofi SA, Bashir N, Nazir F, Ahmad Nayik G. Citrus peel as a source of functional ingredient: a review. J Saudi Soc Agric Sci [Internet]. 2018 Oct 1 [consultado 27 Feb 2024]; 17(4): 351–358. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.jssas.2016.07.006 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jssas.2016.07.006
13. Mwaurah PW, Kumar S, Kumar N, Panghal A, Attkan AK, Singh VK, et al. Physicochemical characteristics, bioactive compounds and industrial applications of mango kernel and its products: a review. Compr Rev Food Sci Food Saf [Internet]. 2020 Sep 1 [consultado 21 Feb 2024]; 19(5): 2421–2446. Disponible en: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12598 DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12598
14. Gómez S, Yory F. Aprovechamiento de recursos renovables en la obtención de nuevos materiales. Ing USBMed [Internet]. 2018 Nov 25 [consultado 24 Abr 2023]; 9(1): 69–74. Disponible en: https://doi.org/10.21500/20275846.3008 DOI: https://doi.org/10.21500/20275846.3008
15. Kumar Y, Yadav AN, Kumar V, Vyas P, Dhaliwal HS. Food waste: a potential bioresource for extraction of nutraceuticals and bioactive compounds. Bioresour Bioprocess [Internet]. 2017 Abr 12 [consultado 22 Abr 2023]; 4(1): 1–14. Disponible en: https://doi.org/10.1186/s40643-017-0148-6 DOI: https://doi.org/10.1186/s40643-017-0148-6
16. Vargas M, Figueroa H, Tamayo J, Toledo V, Moo V. Aprovechamiento de cáscaras de frutas: análisis nutricional y compuestos bioactivos. Cienc Ergo-Sum [Internet]. 2019 [consultado 24 Abr 2023]; 26(2). Disponible en: https://doi.org/10.30878/ces.v26n2a6 DOI: https://doi.org/10.30878/ces.v26n2a6
17. Wong-Paz J, Aguilar-Zárate P, Veana F, Muñiz-Márquez DB. Impacto de las tecnologías de extracción verdes para la obtención de compuestos bioactivos de los residuos de frutos cítricos. TIP Rev Espec en Ciencias Químico-Biológicas [Internet]. 2021 Mar 5; 23 :1–11. Disponible en: https://doi.org/10.22201/fesz.23958723e.2020.0.255 DOI: https://doi.org/10.22201/fesz.23958723e.2020.0.255
18. Gong P, Wang S, Liu M, Chen F, Yang W, Chang X, et al. Extraction methods, chemical characterizations and biological activities of mushroom polysaccharides: a mini-review. Carbohydr Res [Internet]. 2020 Ago; 494: 108037. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.carres.2020.108037 DOI: https://doi.org/10.1016/j.carres.2020.108037
19. Bonilla A. Extracción asistida por enzimas de compuestos fenólicos a partir de cáscara de mango [Internet]. Quito: Escuela Politécnica Nacional; 2021. Disponible en: https://bibdigital.epn.edu.ec/bitstream/15000/22000/1/CD 11495.pdf
20. Cornejo-Figueroa MH, Cartagena-Cutipa R, Alcázar-Alay SC. Tecnologías ecoeficientes para la valoración de residuos agroindustriales en frutas y hortalizas. Ing Investig [Internet]. 2020 [consultado 24 Abr 2023]; 2(1): 294–311. Disponible en: https://revistas.upt.edu.pe/ojs/index.php/ingenieria/article/view/300#:~:text=El creciente desarrollo de tecnologías ecoeficientes para la,generen menor impacto en la contaminación del mismo. DOI: https://doi.org/10.47796/ing.v2i01.300
21. Reche C. Extracción acústica de biocompuestos de subproductos de la alcachofa: efecto de la temperatura [Internet]. Universitat de les Illes Balears; 2018. Disponible en: https://dspace.uib.es/xmlui/bitstream/handle/11201/149246/tfm_2017-18_MCTE_crl891_1947.pdf?sequence=1&isAllowed=y
22. Solarte A, Ruíz-Matute AI, Chito-Trujillo DM, Rada-Mendoza M, Sanz ML. [Internet]. Microwave Assisted Extraction of Bioactive Carbohydrates from Different Morphological Parts of Alfalfa (Medicago sativa L.) Foods [Internet] 2021 Feb 6 [consultado 08 Dic 2024]. Disponible en: https://doi.org/10.3390/foods10020346 DOI: https://doi.org/10.3390/foods10020346
23. Mendoza KG. Efecto del tipo de solvente sobre la concentración de compuestos bioactivos, saponinas y características físicas de extractos de hojas de guayaba (Psidium guajava L.) y aguacate (Persea americana Mill.) [Internet]. Universidad Autónoma del Estado de México; 2019. Disponible en: http://hdl.handle.net/20.500.11799/99169
24. Sharan P, Madan VK. Supercritical carbon dioxide as greener solvent of 21st century [Internet]. Asian Journal of Chemistry. 2018 Feb 28; 30(4): 719–23. Disponible en: https://doi.org/10.14233/ajchem.2018.21150A DOI: https://doi.org/10.14233/ajchem.2018.21150A
25. Juarez CE. Una revisión de la obtención de compuestos bioactivos a partir de subproductos de cítricos procesados: fermentación en estado sólido y métodos de extracción [Internet]. Universidad Nacional de Frontera; 2021. Disponible en: https://alicia.concytec.gob.pe/vufind/Record/UNFS_f84d011447dc6db807d676061b7061e0
26. Arana N. Una revisión de los beneficios en la salud humana y métodos de extracción de compuestos bioactivos de Vaccinium meridionale [Internet]. Universidad Nacional de Frontera; 2021 May 15. Disponible en: http://repositorio.unf.edu.pe/handle/20.500.14679/100
27. Lopes LDS. Extracción de ácido clorogénico y cafeína a partir de posos de café [Internet]. Escuela Politécnica Superior; 2021 Sep. Disponible en: https://repositori.udl.cat/server/api/core/bitstreams/9273bb39-8b34-4f1b-b4e5-f7532309756d/content
28. Calderón ÁE. Métodos de extracción de carotenoides de muestras vegetales [Internet]. Universidad Complutense; 2020 Feb 17. Disponible en: https://es.scribd.com/document/683253731/Alvaro-Espinosa-Calderon
29. Domínguez C, Morantinos A, Álvarez M. Valorización de subproductos de la agroindustria para una economía verde y circular [Internet]. Universidad de Extremadura; 2020. Disponible en: http://hdl.handle.net/10662/11732
30. Acevedo JP, Robledo S, Angarita MS. Subáreas de internacionalización de emprendimientos: una revisión bibliográfica. Econ CUC [Internet]. 2020 Dic 3; 42(1): 249–68. Disponible en: https://doi.org/10.17981/econcuc.42.1.2021.Org.7 DOI: https://doi.org/10.17981/econcuc.42.1.2021.Org.7
31. Hurtado PD, Rodriguez VS, Garcia MC, Restrepo LM, Restrepo IM. Neuromarketing: its current status and research perspectives. J Manag Econ Iberoamerica [Internet]. 2020 Nov 19; 36(157): 525–39. Disponible en: https://doi.org/10.18046/j.estger.2020.157.3890 DOI: https://doi.org/10.18046/j.estger.2020.157.3890
32. Secinaro S, Mas FD, Brescia V, Calandra D. Blockchain in the accounting, auditing and accountability fields: a bibliometric and coding analysis. Accounting, Auditing & Accountability Journal [Internet]. 2021 Ago 19 (2022); 35(9): 168–2003. Disponible en: https://doi.org/10.1108/AAAJ-10-2020-4987 DOI: https://doi.org/10.1108/AAAJ-10-2020-4987
33. Gámez J. Avances en la determinación de compuestos bioactivos en alimentos. Rev Cienc y Tecnol Agrollanía [Internet]. 2022 Feb; 19: 7–17. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/358738872_AVANCES_EN_LA_DETERMINACION_DE_COMPUESTOS_BIOACTIVOS_EN_ALIMENTOS
34. Noce A, Di Lauro M, Di Daniele F, Zaitseva AP, Marrone G, Borboni P, et al. Natural bioactive compounds useful in clinical management of metabolic syndrome. Nutrients [Internet]. 2021 Feb 16; 13(2): 1–37. Disponible en: https://doi.org/10.3390/nu13020630 DOI: https://doi.org/10.3390/nu13020630
35. Tlais AZA, Fiorino GM, Polo A, Filannino P, Cagno R Di. High-Value Compounds in Fruit, Vegetable and Cereal Byproducts: An Overview of Potential Sustainable Reuse and Exploitation. Mol [Internet]. 2020 Jun 30 [consultado 21 Feb 2024]; 25(13): 2987. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules25132987 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25132987
36. Akter B, Rabeta MS. Synbiotic and antioxidant activity of fruit by-products and their effect on human health. Food Res [Internet]. 2021 Feb [consultado 21 Feb 2024]; 5(1): 24–35. Disponible en: https://doi.org/10.26656/fr.2017.5(1).401 DOI: https://doi.org/10.26656/fr.2017.5(1).401
37. Elbadrawy E, Sello A. Evaluation of nutritional value and antioxidant activity of tomato peel extracts. Arab J Chem [Internet]. 2016 Nov 16 [consultado 21 Feb 2024];9:S1010–8. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2011.11.011 DOI: https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2011.11.011
38. Stajčić S, Ćetković G, Čanadanović-Brunet J, Djilas S, Mandić A, Četojević-Simin D. Tomato waste: Carotenoids content, antioxidant and cell growth activities. Food Chem [Internet]. 2015 Abr 1 [consultado 21 Feb 2024]; 172: 225–32. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.09.069 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.09.069
39. Peña-Torres EF, González-Ríos H, Avendaño-Reyes L, Valenzuela-Grijalva NV, Pinelli-Saavedra A, Muhlia-Almazán A, et al. Ácidos hidroxicinámicos en producción animal: farmacocinética, farmacodinamia y sus efectos como promotor de crecimiento. Revisión. Rev Mex Ciencias Pecu [Internet]. 2019 Jun 16 [consultado 19 Mar 2024]; 10(2): 391–415. Disponible en: https://doi.org/10.22319/rmcp.v10i2.4526 DOI: https://doi.org/10.22319/rmcp.v10i2.4526
40. Lim KJA, Cabajar AA, Lobarbio CFY, Taboada EB, Lacks DJ. Extraction of bioactive compounds from mango (Mangifera indica L. var. Carabao) seed kernel with ethanol-water binary solvent systems. J Food Sci Technol [Internet]. 2019 Abr 1 [consultado 21 Feb 2024]; 56(5). Disponible en: https://doi.org/10.1007/s13197-019-03732-7 DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-019-03732-7
41. Farag MA, Abib B, Ayad L, Khattab AR. Sweet and bitter oranges: An updated comparative review of their bioactives, nutrition, food quality, therapeutic merits and biowaste valorization practices. Food Chem [Internet]. 2020 Nov 30 [consultado 21 Feb 2024]; 331: 127306. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127306 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127306
42. Olfa T, Gargouri M, Akrouti A, Brits M, Gargouri M, Ben Ameur R, et al. A comparative study of phytochemical investigation and antioxidative activities of six citrus peel species. Flavour Fragr J [Internet]. 2021 May 31 [consultado 19 Mar 2024]; 36(5): 564–575. Disponible en: https://doi.org/10.1002/ffj.3662 DOI: https://doi.org/10.1002/ffj.3662
43. Ordoñez-Torres A, Torres-León C, Hernández-Almanza A, Flores-Guía T, Luque-Contreras D, Aguilar CN, et al. Ultrasound-microwave-assisted extraction of polyphenolic compounds from Mexican “Ataulfo” mango peels: Antioxidant potential and identification by HPLC/ESI/MS. Phytochem Anal [Internet]. 2020 Otc 1 [citado 21 Feb 2024]; 32(4): 495–502. Disponible en: https://doi.org/10.1002/pca.2997 DOI: https://doi.org/10.1002/pca.2997
44. Safdar MN, Kausar T, Jabbar S, Mumtaz A, Ahad K, Saddozai AA. Extraction and quantification of polyphenols from kinnow (Citrus reticulate L.) peel using ultrasound and maceration techniques. J Food Drug Anal [Internet]. 2017 Jul; 25(3): 488–500. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.jfda.2016.07.010 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfda.2016.07.010
45. Liu, Li X, Zhao P, Zhang X, Qiao O, Huang L, et al. A review of chemical constituents and health-promoting effects of citrus peels. Food Chem [Internet]. 2021 Dic 15 [consultado 19 Mar 2024]; 365(6): 130585. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130585 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130585
46. Tocmo R, Pena-Fronteras J, Calumba KF, Mendoza M, Johnson JJ. Valorization of pomelo (Citrus grandis Osbeck) peel: A review of current utilization, phytochemistry, bioactivities, and mechanisms of action. Compr Rev food Sci food Saf [Internet]. 2020 May 31 [consultado 19 Mar 2024]; 19(4): 1969–2012. Disponible en: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12561 DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12561
47. Szabo K, Cătoi AF, Vodnar DC. Bioactive Compounds Extracted from Tomato Processing by-Products as a Source of Valuable Nutrients. Plant Foods Hum Nutr [Internet]. 2018 Sep 27 [consultado 21 Feb 2024]; 73(4): 268–277. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s11130-018-0691-0 DOI: https://doi.org/10.1007/s11130-018-0691-0
48. Gallo M, Formato A, Ciaravolo M, Langella C, Cataldo R, Naviglio D. A water extraction process for lycopene from tomato waste using a pressurized method: an application of a numerical simulation. Eur Food Res Technol [Internet]. 2019 May 22 [consultado 19 Mar 2024]; 245: 1767–1775. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s00217-019-03300-5 DOI: https://doi.org/10.1007/s00217-019-03300-5
49. Previtera L, Fucci G, De Marco A, Romanucci V, Di Fabio G, Zarrelli A. Chemical and organoleptic characteristics of tomato purée enriched with lyophilized tomato pomace. J Sci Food Agric [Internet]. 2016 Jun 15 [consultado 21 Feb 2024]; 96(6): 1953–8. Disponible en: https://doi.org/10.1002/jsfa.7303 DOI: https://doi.org/10.1002/jsfa.7303
50. Pinheiro A, Silva P, Rodríguez L,Baginsk C, Figueroa V. Fuentes naturales de fitoesteroles y factores de producción que lo modifican. Arch Latinoam Nutr [Internet]. 2016 Oct; 66(11): 17–25. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/355379016_Fuentes_naturales_de_fitoesteroles_y_factores_de_produccion_que_lo_modifican
51. Zayed A, Badawy MT, Farag MA. Valorization and extraction optimization of Citrus seeds for food and functional food applications. Food Chem [Internet]. 2021 Sep 1 [consultado 21 Feb 2024]; 355. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.129609 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.129609
52. Mojica GJ, Pérez MW. Aprovechamiento de residuos agroindustriales de la industria vinícola del valle de sáchica. SENNOVA [Internet]. 2019; 1–116. Disponible en: https://hdl.handle.net/11404/5389
53. López-Astorga M, Molina-Domínguez CC, Ovando-Martínez M, Leon-Bejarano M. Orujo de Uva: Más que un Residuo, una Fuente de Compuestos Bioactivos. Epistemus [Internet]. 2023 Ene 31 (2022); 16(33): 115–22. Disponible en: https://doi.org/10.36790/epistemus.v16i33.283 DOI: https://doi.org/10.36790/epistemus.v16i33.283
54. Mamani J, Molina M. Efecto de los métodos alternativos de extracción sobre el contenido de polifenoles totales, betalaínas y capacidad antioxidantes en residuos de tuna roja (Opuntia ficus-indica L. Miller) [Internet]. Universidad Nacional de Moquegua; 2023. Disponible en: https://repositorio.unam.edu.pe/handle/UNAM/501
55. Rosales RMJ, Vílchez ORD. Importancia de las propiedades nutraceuticas del espárrago (Asparagus Officinalis) en la alimentación humana [Internet]. Universidad Nacional de Frontera; 2022 Dic 16. Disponible en: http://repositorio.unf.edu.pe/handle/20.500.14679/206
56. Ahumada A, Ortega A, Chito D, Benítez R. Saponinas de quinua (Chenopodium quinoa Willd.): un subproducto con alto potencial biológico. Rev Colomb Ciencias Químico - Farm [Internet]. 2016 Sep 1 [consultado 19 Mar 2024]; 45(3). Disponible en: https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v45n3.62043 DOI: https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v45n3.62043
57. Azcona ÁC. La cebolla, una aliada para la salud [Internet]. UCM. 2016. Disponible en: https://www.ucm.es/data/cont/docs/458-2016-11-17-carbajal-cebolla-2016.pdf
58. Baenas N, Moreno DA, García-Viguera C. Estudio de la bioactividad in vitro e in vivo de brotes de brócoli ricos en glucosinolatos/isotiocianatos. Nereis Rev Iberoam Interdiscip Métodos, Model y Simulación [Internet]. 2017; 10: 69–78. Disponible en: https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=6446417
59. Fayos A, Giménez CM, Claver AG. Evolución del conocimiento sobre la pungencia de la cebolla ( Allium cepa L.) y del pimiento ( Capsicum spp.): desde sus orígenes hasta el potencial nutracéutico actual. Revisión bibliográfica. Inf Tec Econ Agrar [Internet]. 2018 Jun 2; 114(2): 99–118. Disponible en: https://doi.org/10.12706/itea.2018.007 DOI: https://doi.org/10.12706/itea.2018.007
60. Ordóñez VA. Análisis del efecto de la α-Solanina en las características citomorfológicas de células vivas adheridas y su relación con la expresión del gen Shroom3 [Internet]. Pontificia Universidad Javeriana; 2019. Disponible en: http://hdl.handle.net/10554/42354
61. Eraso-Grisales S, Mejía-España D, Hurtado-Benavides A. Extraction of glycoalkaloids of native potato (Solanum phureja) ratona morada variety with pressurized liquids. Rev Colomb Ciencias Químico - Farm [Internet]. 2019 Ene 1; 48(1). Disponible en: https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v48n1.80074 DOI: https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v48n1.80074
62. Wang L hao, Tan D hong, Zhong X song, Jia M qi, Ke X, Zhang Y mei, et al. Review on toxicology and activity of tomato glycoalkaloids in immature tomatoes. Food Chem [Internet]. 2024 Jul 30 [consultado 3 Abr 2025]; 447. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2024.138937 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2024.138937
63. Lasano NF, Hamid AH, Karim R, Dek MSP, Shukri R, Ramli NS. Nutritional Composition, Anti-Diabetic Properties and Identification of Active Compounds Using UHPLC-ESI-Orbitrap-MS/MS in Mangifera odorata L. Peel and seed kernel. Molecules [Internet]. 2019 Ene 16 [consultado 21 Feb 2024]; 24(2). Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules24020320 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24020320
64. Dunlop E, Cunningham J, Adorno P, Dabos G, Johnson SK, Black LJ. Vitamin K content of Australian-grown horticultural commodities. Food Chem [Internet]. 2024 Ene 15 [consultado 8 Abr 2025]; 452. Disponible en: https://doi.org/10.48550/arXiv.2401.07473 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2024.139382
65. García SA. Valorización de Residuos Agroindustriales Cítricos para la Obtención de Coproductos Útiles en la Industria Farmacéutica [Internet]. [Santander]: Unidades Tecnológicas de Santander; 2021 [consultado 8 Abr 2025]. Disponible en: http://repositorio.uts.edu.co:8080/xmlui/handle/123456789/6094
66. Czech A, Zarycka E, Yanovych D, Zasadna Z, Grzegorczyk I, Kłys S. Mineral Content of the Pulp and Peel of Various Citrus Fruit Cultivars. Biol Trace Elem Res [Internet]. 2019 Abr 27 [consultado 8 Abr 2025]; 193(2): 555-563. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s12011-019-01727-1 DOI: https://doi.org/10.1007/s12011-019-01727-1
67. Sánchez GG. Influencia del consumo de frutos rojos en sus distintas presentaciones y su relación con el insomnio en adultos entre los 18 y 50 años [Internet]. Quito: Universidad de las Américas, 2024 [consultado 8 Abr 2025]. Disponible en: https://dspace.udla.edu.ec/handle/33000/15916
68. Surco-Laos F, Garcia JA, Bendezú MR, Alvarado AT, Laos-Anchante D, Valle-Campos M, et al. Characterization of polyunsaturated fatty acids and antioxidant activity of Vitis vinifera L. (grape) seeds from the Ica Valley, Peru. J Pharm Pharmacogn Res [Internet]. 2023 Abr 3 [consultado 19 Mar 2024]; 11(2): 270–280. Disponible en: https://doi.org/10.56499/jppres23.1575_11.2.270 DOI: https://doi.org/10.56499/jppres23.1575_11.2.270
69. Granato D, Barba FJ, Bursać Kovačević D, Lorenzo JM, Cruz AG, Putnik P. Functional Foods: Product Development, Technological Trends, Efficacy Testing, and Safety. Annu Rev Food Sci Technol [Internet]. 2020 Ene 6; 11: 93–118. Disponible en: https://doi.org/10.1146/annurev-food-032519-051708 DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-food-032519-051708
70. Ali A, Riaz S, Sameen A, Naumovski N, Iqbal MW, Rehman A, et al. The Disposition of Bioactive Compounds from Fruit Waste, Their Extraction, and Analysis Using Novel Technologies: A Review. Processes [Internet]. 2022 Oct 5; 10(10). Disponible en: https://doi.org/10.3390/pr10102014 DOI: https://doi.org/10.3390/pr10102014
71. Tesfaye B, Tefera T. Extraction of Essential Oil from Neem Seed by Using Soxhlet Extraction Methods. Int J Adv Eng Manag Sci [Internet]. 2017 Jun; 3(6): 646–650. Disponible en: https://dx.doi.org/10.24001/ijaems.3.6.5 DOI: https://doi.org/10.24001/ijaems.3.6.5
72. Sagar NA, Pareek S, Sharma S, Yahia EM, Lobo MG. Fruit and Vegetable Waste: Bioactive Compounds, Their Extraction, and Possible Utilization. Compr Rev Food Sci Food Saf [Internet]. 2018 Mar 25; 17(3): 512–531. Disponible en: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12330 DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12330
73. Sorrenti V, Bur I, Consoli V, Vanella L. Recent Advances in Health Benefits of Bioactive Compounds from Food Wastes and By-Products : Biochemical Aspects. Mol Sci [Internet]. 2023 Ene 19; 28(1). Disponible en: https://doi.org/10.3390/ijms24032019 DOI: https://doi.org/10.3390/ijms24032019
74. Weggler BA, Gruber B, Teehan P, Jaramillo R, Dorman FL. Inlets and sampling. Sep Sci Technol [Internet]. 2020 [consultado 8 Ago 2023]; 12: 141–203. Disponible en: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-813745-1.00005-2 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-813745-1.00005-2
75. Santos, Santana LCL de A. Conventional and emerging techniques for extraction of bioactive compounds from fruit waste. Brazilian J Food Technol [Internet]. 2022; 25. Disponible en: https://doi.org/10.1590/1981-6723.13021 DOI: https://doi.org/10.1590/1981-6723.13021
76. Rajesh Y, Khan NM, Raziq Shaikh A, Mane VS, Daware G, Dabhade G. Investigation of geranium oil extraction performance by using soxhlet extraction. Mater Today Proc [Internet]. 2023; 72(5): 2610–2617. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.matpr.2022.07.276 DOI: https://doi.org/10.1016/j.matpr.2022.07.276
77. Rodríguez SL, Raghavan V. Green extraction techniques from fruit and vegetable waste to obtain bioactive compounds—A review. Crit Rev Food Sci Nutr [Internet]. 2022 Abr 1; 62(23): 6446–6466. Disponible en: https://doi.org/10.1080/10408398.2021.1901651 DOI: https://doi.org/10.1080/10408398.2021.1901651
78. Malik J, Mandal SC. Extraction of herbal biomolecules. En: Mandal SC, Nayak AK, Dhara AK, editors. Herbal Biomolecules in Healthcare Applications [Internet]. Academic Press; 2022 [consultado 11 Jun 2024]. p. 21–46. Disponible en: https://doi.org/10.1016/B978-0-323-85852-6.00015-9 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-323-85852-6.00015-9
79. Nafiu MO, Hamid AA, Muritala HF, Adeyemi SB. Preparation, Standardization, and Quality Control of Medicinal Plants in Africa. En: Kuete V. Medicinal Spices Vegetables from Africa Therapeutic Potential Against Metabolic Inflammatory, Infectious Systemic Diseases [Internet].Academic Press; 2017 Jun 1 [consultado 8 Ago 2023]; 171–204. Disponible en: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-809286-6.00007-8 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-809286-6.00007-8
80. Martins R, Barbosa A, Advinha B, Sales H, Pontes R, Nunes J. Green extraction techniques of bioactive compounds: a state-of-the-art review. Processes [Internet]. 2023 Jul 24; 11(8). Disponible en: https://doi.org/10.3390/pr11082255 DOI: https://doi.org/10.3390/pr11082255
81. Beghè D, Giordano C, Pizzo B, Lolli V, Caligiani A, Bonzanini F, et al. Characterization of Pomegranate (Punica granatum L.) through the Morphoanatomical and Lipid Profile of Seeds for the Valorisation of Italian Accessions. Sustainability [Internet]. 2022 Nov 9; 14(22). Disponible en: https://doi.org/10.3390/su142214780 DOI: https://doi.org/10.3390/su142214780
82. Vidal E, Sierra Ramírez R, Cruz Reina LJ. Recuperación de compuestos fenólicos de la pulpa del café por medio de una percolación a través de un extractor Soxhlet en escala piloto. Res gate [Internet]. 2022 Sep. Disponible en: https://doi.org/10.26507/paper.2312 DOI: https://doi.org/10.26507/paper.2312
83. Colina-Márquez Á, Contreras E, Ruiz J, Monroy L. Comparación de dos métodos de extracción para el aceite esencial de la cáscara de pomelo (Citrus maxima). Rev Ing-Nova [Internet]. 2022 Feb 7; 1(1): 85–98. Disponible en: https://doi.org/10.32997/rin-2022-3729 DOI: https://doi.org/10.32997/rin-2022-3729
84. Sagarika N, Prince M V., Kothakota A, Pandiselvam R, Sreeja R, Mathew SM. Characterization and Optimization of Microwave Assisted Process for Extraction of Nutmeg (Myristica fragrans Houtt.) Mace Essential Oil. J Essent Oil Bear Plants [Internet]. 2018 Oct 23 [consultado 19 Nov 2023]; 21(4): 895–904. Disponible en: https://doi.org/10.1080/0972060X.2018.1517613 DOI: https://doi.org/10.1080/0972060X.2018.1517613
85. Cañavi MJG. Aplicación del ultrasonido en la extracción por hidrodestilación y microondas de aceite esencial de cáscara de limón (Citrus aurantifolia) [Internet]. Universidad Nacional Agraria La Molina; 2022. Disponible en: https://hdl.handle.net/20.500.12996/5444
86. Duarte-Trujillo A, Jiménez-Forero J, Pineda-Insuasti J, González-Trujillo C, García-Juárez M. Extracción de sustancias bioactivas de Pleurotus ostreatus (Pleurotaceae) por maceración dinámica. Acta biol Colomb [Internet]. 2020 Ene 1; 25(1): 61–74. Disponible en: https://doi.org/10.15446/abc.v25n1.72409 DOI: https://doi.org/10.15446/abc.v25n1.72409
87. Azwanida NN. A review on the extraction methods use in medicinal plants, principle, strength and limitation. Med Aromat Plants [Internet]. 2015 Jul 6; 4(3). Disponible en: https://www.semanticscholar.org/paper/A-Review-on-the-Extraction-Methods-Use-in-Medicinal-Nn/1f57ac7b5510db3fbf1e5066579e35f2dfdb0b11
88. Quishpe TSM. Obtención de un extracto vegetal de la Ortiga mayor (urtica dioica) aplicando el método de maceración en frío para la elaboración de Queso fresco [Internet]. Universidad Técnica de Cotopaxi; 2019. Disponible en: https://repositorio.utc.edu.ec/items/429f281f-f9d6-48a7-89e2-5295eab0ee2f
89. Naviglio D, Formato A, Vitulano M, Cozzolino I, Ferrara L, Zanoelo FE, et al. Comparison between the kinetics of conventional maceration and a cyclic pressurization extraction process for the production of lemon liqueur using a numerical model. J Food Process Eng [Internet]. 2017 Feb 5; 40(2). Disponible en: https://doi.org/10.1111/jfpe.12350 DOI: https://doi.org/10.1111/jfpe.12350
90. Yasig QOM. Obtención de un extracto vegetal de la ortiga mayor (urtica dioica) por maceración con calor para la elaboración de queso fresco. [Internet]. Universidad Técnica de Cotopaxi; 2019 Feb. Disponible en: http://repositorio.utc.edu.ec/bitstream/27000/7757/1/PC-000676.pdf
91. Frosi I, Montagna I, Colombo R, Milanese C, Papetti A. Recovery of Chlorogenic Acids from Agri-Food Wastes: Updates on Green Extraction Techniques. Molecules [Internet]. 2021 Jul 27 [consultado 4 Oct 2023]; 26(15): 4515. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules26154515 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26154515
92. Bakhattar I, Koukouch A, Chater H, Mohamed A, Mouaky A, Idlimam A. Thermodynamic analysis of discontinuous adsorption isotherms of different types of oil pomace. Heat mass Transf [Internet]. 2022 Sep 19; 58: 613–630. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s00231-021-03120-y DOI: https://doi.org/10.1007/s00231-021-03120-y
93. Ćujić N, Šavikin K, Jankovic T, Pljevljakušic D, Zdunic G, Ibric S. Optimization of polyphenols extraction from dried chokeberry using maceration as traditional technique. Food Chem [Internet]. 2016 Mar; 194: 135–142. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.08.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.08.008
94. Banerjee J, Singh R, Vijayaraghavan R, MacFarlane D, Patti AF, Arora A. Bioactives from fruit processing wastes: Green approaches to valuable chemicals. Food Chem [Internet]. 2017 Jun 15 [consultado 12 Nov 2023]; 225: 10–22. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.12.093 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.12.093
95. Reinoso Y, Robert P, Ortiz J, Echeverría F, Sanhueza L. P363/s6-p42 desarrollo de un ingrediente funcional mediante extracción asistida por ultrasonido y microencapsulación con quitosano de residuos de arándanos var. Legacy. Arch Latinoam Nutr [Internet]. 2023; 73(1). Disponible en: https://www.alanrevista.org/ediciones/2023/suplemento-1/art-461/
96. Patra A, Abdullah S, Pradhan RC. Review on the extraction of bioactive compounds and characterization of fruit industry by-products. Bioresour Bioprocess [Internet]. 2022 Feb 18 [consultado 12 Nov 2023]; 9(14): 1–25. Disponible en: https://doi.org/10.1186/s40643-022-00498-3 DOI: https://doi.org/10.1186/s40643-022-00498-3
97. Wong-Paz JE, Muñiz-Márquez DB, Aguilar-Zárate P, Ascacio-Valdés JA, Cruz K, Reyes-Luna C, et al. Extraction of Bioactive Phenolic Compounds by Alternative Technologies. Ingredients Extr by Physicochem Methods Food [Internet]. 2017 Jun 1 [consultado 6 Feb 2025];229–52. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/B9780128115213000053 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811521-3.00005-3
98. Medina-Torres N, Ayora-Talavera T, Espinosa-Andrews H, Sánchez-Contreras Á, Pacheco N. Ultrasound assisted extraction for the recovery of phenolic compounds from vegetable sources. Agronomy [Internet]. 2017 Jul 7; 7(3): 47. Disponible en: https://doi.org/10.3390/agronomy7030047 DOI: https://doi.org/10.3390/agronomy7030047
99. Fajardo D, Sanchez F, Dueñas J, Dueñas A. Extraccion asistida por ultrasonido y su aplicacion en la obtencion de aceites vegetales. Cent Azucar [Internet]. 2022 Dic; 49(4): 125–143. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/373395723_EXTRACCION_ASISTIDA_POR_ULTRASONIDO_Y_SU_APLICACION_EN_LA_OBTENCION_DE_ACEITES_VEGETALES
100. Selvamuthukumaran M, Shi J. Recent advances in extraction of antioxidants from plant by-products processing industries. Food Qual Saf [Internet]. 2017 Mar; 1(1): 61–81. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/322281951_Recent_advances_in_extraction_of_antioxidants_from_plant_by-products_processing_industries DOI: https://doi.org/10.1093/fqs/fyx004
101. Wen C, Zhang J, Zhang H, Dzah CS, Zandile M, Duan Y, et al. Advances in ultrasound assisted extraction of bioactive compounds from cash crops – A review. Ultrason Sonochem [Internet]. 2018 Nov [consultado 13 Nov 2023]; 48: 538–549. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2018.07.018 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2018.07.018
102. Campos MRG, Hernández MJA, Peláez AA, Hernández SI, Reyes MA, González ML. Tecnologías sustentables (microondas, ultrasonido y CO2 supercrítico) para extracción de compuestos bioactivos en propóleo. Boletín Ciencias Agropecu del ICAP [Internet]. 2023 May; 9(Especial): 20–5. Disponible en: https://doi.org/10.29057/icap.v9iEspecial.9260 DOI: https://doi.org/10.29057/icap.v9iEspecial.9260
103. Živković J, Šavikin K, Janković T, Ćujić N, Menković N. Optimization of ultrasound-assisted extraction of polyphenolic compounds from pomegranate peel using response surface methodology. Sep Purif Technol [Internet]. 2018 Abr; 194: 40–47. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.seppur.2017.11.032 DOI: https://doi.org/10.1016/j.seppur.2017.11.032
104. Gunes R, Palabiyik I, Toker OS, Konar N, Kurultay S. Incorporation of defatted apple seeds in chewing gum system and phloridzin dissolution kinetics. J Food Eng [Internet]. 2019 Ag; 255: 9–14. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2019.03.010 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2019.03.010
105. Chemat F, Rombaut N, Meullemiestre A, Turk M, Perino S, Fabiano-Tixier AS, et al. Review of Green Food Processing techniques. Preservation, transformation, and extraction. Innov Food Sci Emerg Technol [Internet]. 2017 Jun; 41: 357–377. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ifset.2017.04.016 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ifset.2017.04.016
106. Otálora-Orrego D, Martin DA. Técnicas emergentes de extracción de β-caroteno para la valorización de subproductos agroindustriales de la zanahoria (Daucus carota L.): una revisión. Inf Técnico [Internet]. 2020 Oct 6; 85(1): 83–106. Disponible en: https://doi.org/10.23850/22565035.2857 DOI: https://doi.org/10.23850/22565035.2857
107. Ameer K, Shahbaz HM, Kwon JH. Green Extraction Methods for Polyphenols from Plant Matrices and Their Byproducts: A Review. Compr Rev Food Sci Food Saf [Internet]. 2017 Nov 17 [consultado 19 Nov 2023]; 16(2): 295–315. Disponible en: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12253 DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12253
108. Halaliza N, Zulkifly A. Microwave-Assisted Extraction of Phenolic Compound From Pineapple Skins: the Optimum Operating Condition and Comparison With Soxhlet Extraction. Malaysian J Anal Sci [Internet]. 2017 Feb 5; 21(3): 690–699. Disponible en: https://doi.org/10.17576/mjas-2017-2103-18 DOI: https://doi.org/10.17576/mjas-2017-2103-18
109. Chuyen H V, Nguyen MH, Roach PD, Golding JB, Parks SE, Hoang C, et al. Microwave-assisted extraction and ultrasound-assisted extraction for recovering carotenoids from Gac peel and their effects on antioxidant capacity of the extracts. Food Sci Nutr [Internet]. 2017 Nov 20 [consultado 19 Nov 2023]; 6(1): 189-196. Disponible en: https://doi.org/10.1002/fsn3.546 DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.546
110. Rahayu PP, Rosyidi D, Purwadi, Thohari I. Characteristics of catechin extracted from cocoa husks using microwave assisted extraction ( MAE ). Biodiversitas [Internet]. 2019 Dic 12; 20(12): 3626–3631. Disponible en: https://doi.org/10.13057/biodiv/d201222 DOI: https://doi.org/10.13057/biodiv/d201222
111. Zain NM, Nazeri MA. Antioxidant and Mineral Content of Pitaya Peel Extract obtained using Microwave Assisted Extraction (MAE). Australian Journal of Basic and Applied Sciences [Internet]. 2016 Dic; 10(17): 63–68. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/323709501_Antioxidant_and_Mineral_Content_of_Pitaya_Peel_Extract_obtained_using_Microwave_Assisted_Extraction_MAE
112. Román M, Rivera C, Cardona L, Muñoz L, Gomez D, Passaro C, et al. Guia de Extracción por Fluidos Supercríticos: Fundamentos y Aplicaciones [Internet]. Tecnoparque 2016. Disponible en: https://repositorio.sena.edu.co/bitstream/handle/11404/4698/guia_extraccion_fluidos_supercriticos.pdf?sequence=1
113. Cardoso PM, Dariva C, Barroso Vieira GÂ, Hense H. Extraction and evaluation of antioxidant potential of the extracts obtained from tamarind seeds (Tamarindus indica), sweet variety. J Food Eng [Internet]. 2016 Mar; 173: 116–123. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2015.11.001 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2015.11.001
114. Meñaca E, Restrepo J, Colmenares AJ. Actividad antioxidante del complejo de inclusión del extracto de semilla de Bixa orellana en β-ciclodextrina obtenido por CO2 supercrítico. Vitae [Internet]. 2018 Ago 31; 25(2). Disponible en: https://doi.org/10.17533/udea.vitae.v25n2a04 DOI: https://doi.org/10.17533/udea.vitae.v25n2a04
115. Cuco R, Cardozo-Filho L, Silva C da. Simultaneous extraction of seed oil and active compounds from peel of pumpkin (Cucurbita maxima) using pressurized carbon dioxide as solvent. J Supercrit Fluids [Internet]. 2019 Ene; 143: 8–15. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.supflu.2018.08.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.supflu.2018.08.002
116. Natolino A, Da Porto C. Supercritical carbon dioxide extraction of pomegranate (Punica granatum L.) seed oil: Kinetic modelling and solubility evaluation. J Supercrit Fluids [Internet]. 2019 Sep; 151: 30–39. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.supflu.2019.05.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.supflu.2019.05.002
117. Basri MSM, Shah NNAK, Sulaiman A, Tawakkal ISMA, Nor MZM, Ariffin SH, et al. Progress in the valorization of fruit and vegetable wastes: Active packaging, biocomposites, by-products, and innovative technologies used for bioactive compound extraction. Polymers (Basel) [Internet]. 2021 Oct 12; 13(20). Disponible en: https://doi.org/10.3390/polym13203503 DOI: https://doi.org/10.3390/polym13203503
118. Ranjha MMAN, Kanwal R, Shafique B, Arshad RN, Irfan S, Kieliszek M, et al. A critical review on pulsed electric field: A novel technology for the extraction of phytoconstituents. Molecules [Internet]. 2021 Ago 12; 26(16). Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules26164893 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26164893
119. Carpentieri S, Ferrari G, Pataro G. Optimization of Pulsed Electric Fields-Assisted Extraction of Phenolic Compounds From White Grape Pomace Using Response Surface Methodology. Front Sustain Food Syst [Internet]. 2022 Abr 12; 6. Disponible en: https://doi.org/10.3389/fsufs.2022.854968 DOI: https://doi.org/10.3389/fsufs.2022.854968
120. Frontuto D, Carullo D, Harrison SM, Brunton NP, Ferrari G, Lyng JG, et al. Optimization of Pulsed Electric Fields-Assisted Extraction of Polyphenols from Potato Peels Using Response Surface Methodology. Food Bioprocess Technol [Internet]. 2019 Ago 27; 12: 1708–1720. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s11947-019-02320-z DOI: https://doi.org/10.1007/s11947-019-02320-z
121. Barbosa-Pereira L, Guglielmetti A, Zeppa G. Pulsed Electric Field Assisted Extraction of Bioactive Compounds from Cocoa Bean Shell and Coffee Silverskin. Food Bioprocess Technol [Internet]. 2018 Ene 13; 11: 818–835. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s11947-017-2045-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s11947-017-2045-6
122. Uddin MS, Ferdosh S, Haque Akanda MJ, Ghafoor K, Rukshana AH, Ali ME, et al. Techniques for the extraction of phytosterols and their benefits in human health: a review. Sep Sci Technol [Internet]. 2018 Abr 4; 53(14) :2206–2223. Disponible en: https://doi.org/10.1080/01496395.2018.1454472?urlappend=%3Futm_source%3Dresearchgate.net%26utm_medium%3Darticle DOI: https://doi.org/10.1080/01496395.2018.1454472
123. Cascaes AS, Hidalgo DW, Zarur MA, Rosenthal A, Fortes LM, Tonon RV. Combination of enzyme-assisted extraction and high hydrostatic pressure for phenolic compounds recovery from grape pomace. J Food Eng [Internet]. 2021 Jun; 288. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2020.110128 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2020.110128
124. Valladares-Diestra K, Vandenberghe LP, Soccol CR. Oilseed Enzymatic Pretreatment for Efficient Oil Recovery in Biodiesel Production Industry: a Review. Bioenergy Res [Internet]. 2020 May 7; 13: 1016–1030. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s12155-020-10132-9 DOI: https://doi.org/10.1007/s12155-020-10132-9
125. Liu JJ, Gasmalla MAA, Li P, Yang R. Enzyme-assisted extraction processing from oilseeds: Principle, processing and application. Innov Food Sci Emerg Technol [Internet]. 2016 Jun [consultado 11 Jun 2024]; 35: 184–193. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ifset.2016.05.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ifset.2016.05.002
126. Chiang CF, Lai LS. Effect of enzyme-assisted extraction on the physicochemical properties of mucilage from the fronds of Asplenium australasicum (J. Sm.) Hook. Int J Biol Macromol [Internet]. 2019 Mar 1 [consultado 11 Jun 2024]; 124: 346–353. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.11.181 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.11.181
127. Patil PD, Patil SP, Kelkar RK, Patil NP, Pise P V., Nadar SS. Enzyme-assisted supercritical fluid extraction: An integral approach to extract bioactive compounds. Trends Food Sci Technol [Internet]. 2021 Oct [consultado 11 Jun 204]; 116: 357–369. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.07.032 DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.07.032
128. Ngamwonglumlert L, Devahastin S, Chiewchan N. Natural colorants: Pigment stability and extraction yield enhancement via utilization of appropriate pretreatment and extraction methods. Crit Rev Food Sci Nutr [Internet]. 2017 Oct 13 [consultado 11 Jun 2024]; 57(15): 3243–3259. Disponible en: https://doi.org/10.1080/10408398.2015.1109498 DOI: https://doi.org/10.1080/10408398.2015.1109498
129. Łubek-Nguyen A, Ziemichód W, Olech M. Application of Enzyme-Assisted Extraction for the Recovery of Natural Bioactive Compounds for Nutraceutical and Pharmaceutical Applications. Appl Sci [Internet]. 2022 Mar 22; 12(7). Disponible en: https://doi.org/10.3390/app12073232 DOI: https://doi.org/10.3390/app12073232
130. Abbassi A, Mahmoudi H, Zaouali W, M’Rabet Y, Casabianca H, Hosni K. Enzyme-aided release of bioactive compounds from coriander (Coriandrum sativum L.) seeds and their residue by-products and evaluation of their antioxidant activity. J Food Sci Technol [Internet]. 2018 May 23; 55: 3065–3076. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s13197-018-3229-4 DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-018-3229-4
131. Ricarte GN, Coelho MAZ, Marrucho IM, Ribeiro BD. Enzyme-assisted extraction of carotenoids and phenolic compounds from sunflower wastes using green solvents. 3 Biotech [Internet]. 2020 Ago 25; 10. Disponible en: https://doi.org/10.1007/s13205-020-02393-0 DOI: https://doi.org/10.1007/s13205-020-02393-0
132. Borrás-Sandoval LM, Torres-Vidales G. Producción de alimentos para animales a través de fermentación en estado sólido – FES. ORINOQUIA [Internet]. 2016 Dic [consultado 24 Sep 2023]; 20(2): 47–54. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-37092016000200007&lng=en DOI: https://doi.org/10.22579/20112629.353
133. Amaya-Salcedo JC, Cárdenas-González OE, Gómez-Castaño JA. Extracción sólido-líquido y determinación por HPLC/UV del compuesto cianogénico amigdalina de semillas de manzana (Malus pumila Mill): una comparación entre las metodologías de extracción tradicional y por microondas. Acta Agronómica [Internet]. 2018 Jul 1 [consultado 13 Mar 2025]; 67(3): 381–388. Disponible en: https://doi.org/10.15446/acag.v67n3.67186 DOI: https://doi.org/10.15446/acag.v67n3.67186
134. Cuan DJ, Pitre L, Galván D. Comparison of two extraction methods for the phytochemical analysis of alcoholic extracts from leaves of Plectranthus amboinicus (Lour.) Spreng. Cienc e Ing [Internet]. 2023 Jun 26; 11(1). Disponible en: https://doi.org/10.5281/zenodo.12549588
135. Angel M, Mejía P, Mosquera-Mosquera N, Benjamín I, Ii R. Estudio de la capacidad antioxidante in vitro de Phaseolus vulgaris L. (frijol) mediante extracción asistida por microondas. Rev Cuba Plantas Med [Internet]. 2016 Mar [consultado 13 Mar 2025]; 21(1): 42–50. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1028-47962016000100005&lng=es
136. Seguil M, Egas P, Avilez H, Blas B, Huamanlazo Z. Evaluación de la extracción de alcaloides de la semilla de tarwi (Lupinus mutabilis), por microondas, ultrasonido y convencional. Journal of Agri-food Science. J Agri-Food Sci [Internet]. 2020 Jun 31 [consultado 13 Mar 2025]; 1(1): 37–46. Disponible en: https://revistas.uncp.edu.pe/index.php/jafs/article/view/472
137. Hernández Malca KA, Velásquez Ruiz AP. Extracción y caracterización de capsaicinoides a partir de desechos orgánicos en la industria de jalapeño verde (capsicum annztum L.) [Internet]. Repos Inst - UNS. 2018 [consultado 16 Mar 2025]; Disponible en: https://alicia.concytec.gob.pe/vufind/Record/UNSR_6891d955da149057abe4192cc9d5a67e
138. Bautista S, Omar J. Optimización de extracción de teobromina asistida por ultrasonido a partir de residuos de la industria de cacao (Theobroma cacao). Univ Nac del Cent del Perú [Internet]. 2020 [consultado 16 Mar 2025]; Disponible en: http://hdl.handle.net/20.500.12894/6121
139. Yan LG, He L, Xi J. High intensity pulsed electric field as an innovative technique for extraction of bioactive compounds-A review. Crit Rev Food Sci Nutr [Internet]. 2017 Sep 2 [consultado 24 Mar 2025]; 57(13): 2877–2788. Disponible en: https://doi.org/10.1080/10408398.2015.1077193 DOI: https://doi.org/10.1080/10408398.2015.1077193
140. Boateng ID. Recent advances in combined Avant-garde technologies (thermal-thermal, non-thermal-non-thermal, and thermal-non-thermal matrix) to extract polyphenols from agro byproducts. J Food Drug Anal [Internet]. 2023 Dic 15 [consultado 24 Mar 2025]; 31(4): 1. Disponible en: https://doi.org/10.38212/2224-6614.3479 DOI: https://doi.org/10.38212/2224-6614.3479
141. Putra LS, Sukweenadhi J, Nathania C, Wibowo ES, Buschle-Diller G, Marianti Purwanto MG. Comparative study of polyphenolic compound extraction from empty palm fruit bunches and sugarcane pulp. Heliyon [Internet]. 2022 Feb [consultado 24 Mar 2025]; 8(2): e08951. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e08951 DOI: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e08951
142. Lopez-Carranza MK. Optimización de la extracción asistida por ultrasonido de los compuestos fenólicos de cedroncillo (Aloysia herrerae) y pampa muña (Hedeoma mandoniana) [Internet]. Universidad Nacional Agraria La Molina; 2024 [consultado 24 Mar 2025]. Disponible en: https://hdl.handle.net/20.500.12996/6547
143. Portela RC, Fiuza T de S, Bezerra DG, Bailão EFLC, de Paula JAM, de Paula JR, et al. Optimización de la extracción asistida por ultrasonido de compuestos fenólicos y flavonoides de la hoja de Hortia oreadica. Boletín Latinoam y del Caribe Plantas Med y Aromáticas [Internet]. 2023 Jun 5 [consultado 24 Mar 2025]; 22(6): 887–95. Disponible en: https://doi.org/10.37360/blacpma.23.22.6.60 DOI: https://doi.org/10.37360/blacpma.23.22.6.60
144. Chang Y, Shi X, He F, Wu T, Jiang L, Normakhamatov N, et al. Valorization of Food Processing Waste to Produce Valuable Polyphenolics. J Agric Food Chem [Internet]. 2022 Jul 14 [consultado 24 Mar 2025]; 70(29): 8855–70. Disponible en: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.2c02655 DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.2c02655
145. Athanasiadis V, Chatzimitakos T, Kotsou K, Kalompatsios D, Bozinou E, Lalas SI. Polyphenol Extraction from Food (by) Products by Pulsed Electric Field: A Review. Int J Mol Sci [Internet]. 2023 Nov 2 [consultado 24 Mar 2025]; 24(21): 15914. Disponible en: https://doi.org/10.3390/ijms242115914 DOI: https://doi.org/10.3390/ijms242115914
146. Tran HD, Nguyen NTT, Phuong TT, Nguyen QH, Dang V-H. Soxhlet extraction of Momordica cochinchinensis fruit peel for β-carotene recovery. RSC Adv [Internet]. 2025 Feb 28 [consultado 24 Mar 2025]; 15(9): 6764–6773. Disponible en: https://doi.org/10.1039/D4RA08999E DOI: https://doi.org/10.1039/D4RA08999E
147. Viñas-Ospino A, López-Malo D, Esteve MJ, Frígola A, Blesa J. Green Solvents: Emerging Alternatives for Carotenoid Extraction from Fruit and Vegetable By-Products. Foods [Internet]. 2023 Feb 17 [consultado 24 Mar 2025]; 12(4): 863. Disponible en: https://doi.org/10.3390/foods12040863 DOI: https://doi.org/10.3390/foods12040863
148. de Andrade M, Kestekoglou I, Charalampopoulos D, Chatzifragkou A. Supercritical Fluid Extraction of Carotenoids from Vegetable Waste Matrices. Molecules [Internet]. 2019 Ene 28 [consultado 24 Mar 2025]; 24(3): 466. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules24030466 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24030466
149. Kultys E, Kurek MA. Green Extraction of Carotenoids from Fruit and Vegetable Byproducts: A Review. Molecules [Internet]. 2022 Ene 14 [consultado 24 Mar 2025]; 27(2): 518. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules27020518 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27020518
150. Li S, Zhang R, Lei D, Huang Y, Cheng S, Zhu Z, et al. Impact of ultrasound, microwaves and high-pressure processing on food components and their interactions. Trends Food Sci Technol [Internet]. 2021 Mar;109: 1–15. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.01.017 DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.01.017
151. Luengo E, Álvarez I, Raso J. Improving carotenoid extraction from tomato waste by pulsed electric fields. Front Nutr [Internet]. 2014 Ago 12 [consultado 24 Mar 2025];1: 12. Disponible en: https://doi.org/10.3389/fnut.2014.00012 DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2014.00012
152. Wang Y, Huang J, Lin X, Su W, Zhu P, Yang N, et al. Recent progress in the extraction of terpenoids from essential oils and separation of the enantiomers by GC–MS. J Chromatogr A [Internet]. 2024 Ago 16 [consultado 24 Mar 2025]; 1730: 465118. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.chroma.2024.465118 DOI: https://doi.org/10.1016/j.chroma.2024.465118
153. Herzyk F, Piłakowska-Pietras D, Korzeniowska M. Supercritical Extraction Techniques for Obtaining Biologically Active Substances from a Variety of Plant Byproducts. Foods [Internet]. 2024 May 30 [consultado 24 Mar 2025];13(11):1713. Disponible en: https://doi.org/10.3390/foods13111713 DOI: https://doi.org/10.3390/foods13111713
154. Vo TP, Pham TV, Tran TNH, Vo LTV, Vu TT, Pham ND, et al. Ultrasonic-Assisted and Microwave-Assisted Extraction of Phenolics and Terpenoids from Abelmoschus sagittifolius (Kurz) Merr Roots Using Natural Deep Eutectic Solvents. ACS omega [Internet]. 2023 Jul 31 [consultado 24 Mar 2025]; 8(32): 29704–16. Disponible en: https://doi.org/10.1021/acsomega.3c03929 DOI: https://doi.org/10.1021/acsomega.3c03929
155. Kumar K, Srivastav S, Sharanagat VS. Ultrasound assisted extraction (UAE) of bioactive compounds from fruit and vegetable processing by-products: A review. Ultrason Sonochem. [Internet]. 2021 Ene; 70: 105325. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2020.105325 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2020.105325
156. Guacas YM, Narváez DM, Tacan AN. Aprovechamiento de los flavonoides de los subproductos de la Cebolla Junca en la Finca “el Quinche” Corregimiento de Buesaquillo Pasto - Nariño [Internet]. Pasto - Nariño; 2024 Abr 22 [consultado 24 Mar 2025]. Disponible en: https://hdl.handle.net/20.500.14112/28289
157. Heyerdahl I. Revisión sobre las características, propiedades terapéuticas y obtención de flavonoides [Internet]. [Xochimilco]: Universidad Autónoma Metropolitana. Unidad Xochimilco; 2021 [consultado 24 Mar 2025]. Disponible en: https://repositorio.xoc.uam.mx/jspui/handle/123456789/26319
158. Tena N, Asuero AG. Up-To-Date Analysis of the Extraction Methods for Anthocyanins: Principles of the Techniques, Optimization, Technical Progress, and Industrial Application. Antioxidants (Basel, Switzerland) [Internet]. 2022 Ene 30 [consultado 25 Mar 2025]; 11(2): 286. Disponible en: https://doi.org/10.3390/antiox11020286 DOI: https://doi.org/10.3390/antiox11020286
159. Leichtweis MG, Pereira C, Prieto MA, Barreiro MF, Baraldi IJ, Barros L, et al. Ultrasound as a Rapid and Low-Cost Extraction Procedure to Obtain Anthocyanin-Based Colorants from Prunus spinosa L. Fruit Epicarp: Comparative Study with Conventional Heat-Based Extraction. Molecules [Internet]. 2019 Feb 5 [consultado 25 Mar 2025]; 24(3): 573. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules24030573 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules24030573
160. Nunes AN, Borges A, Matias AA, Bronze MR, Oliveira J. Alternative Extraction and Downstream Purification Processes for Anthocyanins. Molecules [Internet]. 2022 Ene 7 [consultado 25 Mar 2025]; 27(2): 368. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules27020368 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27020368
161. Cid-Ortega S, Monroy-Rivera JA. Extraction of Kaempferol and Its Glycosides Using Supercritical Fluids from Plant Sources: A Review. Food Technol Biotechnol [Internet]. 2018 Dic [consultado 25 Mar 2025]; 56(4): 480. Disponible en: https://doi.org/10.17113/ftb.56.04.18.5870 DOI: https://doi.org/10.17113/ftb.56.04.18.5870
162. He Y, Wen L, Liu J, Li Y, Zheng F, Min W, et al. Optimisation of pulsed electric fields extraction of anthocyanin from Beibinghong Vitis Amurensis Rupr. Nat Prod Res [Internet]. 2018 Ene [consultado 25 Mar 2025]; 32(1) :23–29. Disponible en: https://doi.org/10.1080/14786419.2017.1324963 DOI: https://doi.org/10.1080/14786419.2017.1324963
163. Arruda HS, Silva EK, Araujo NMP, Pereira GA, Pastore GM, Junior MRM. Anthocyanins Recovered from Agri-Food By-Products Using Innovative Processes: Trends, Challenges, and Perspectives for Their Application in Food Systems. Molecules [Internet]. 2021 Abr 30 [consultado 25 Mar 2025]; 26(9): 2632. Disponible en: https://doi.org/10.3390/molecules26092632 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26092632
164. de Faria DC, de Queiroz MELR, Novaes FJM. Direct Hot Solid–Liquid Extraction (DH-SLE): A High-Yield Greener Technique for Lipid Recovery from Coffee Beans. Plants [Internet]. 2025 Ene 11 [consultado 25 Mar 2025]; 14(2): 185. Disponible en: https://doi.org/10.3390/plants14020185 DOI: https://doi.org/10.3390/plants14020185
165. Dimić I, Pavlić B, Rakita S, Cvetanović Kljakić A, Zeković Z, Teslić N. Isolation of Cherry Seed Oil Using Conventional Techniques and Supercritical Fluid Extraction. Foods. [Internet]. 2022 Dic 20; 12(1): 11. Disponible en: https://doi.org/10.3390/foods12010011 DOI: https://doi.org/10.3390/foods12010011
166. Souza DES, Melo JJC de, Santos FF dos, Vasconcelos AL dos S, Jesus A dos S de, Freitas L dos S, et al. Microwave-Assisted vs. Conventional Extraction of Moringa oleifera Seed Oil: Process Optimization and Efficiency Comparison. Foods. [Internet]. 2024 Sep 22 [consultado 25 Mar 2025]; 13(19): 3141. Disponible en: https://doi.org/10.3390/foods13193141 DOI: https://doi.org/10.3390/foods13193141
167. Bacca AJ, España J. Revisión bibliográfica de metodologías para el aprovechamiento de residuos de frutas y verduras para la obtención de compuestos bioactivos y su uso en alimentos funcionales [Internet]. Universidad Nacional Abierta y a Distancia; 2024 Ago 24 [consultado 25 Mar 2025]. Disponible en: https://repository.unad.edu.co/handle/10596/63550
168. Chemat F, Rombaut N, Sicaire AG, Meullemiestre A, Fabiano-Tixier AS, Abert-Vian M. Ultrasound assisted extraction of food and natural products. Mechanisms, techniques, combinations, protocols and applications. A review. Ultrason Sonochem [Internet]. 2017 Ene [consultado 25 Mar 2025]; 34: 540–60. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2016.06.035 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2016.06.035
169. Martínez Á, Santana A. Evaluación de un proceso para la obtención de fitoesteroles partiendo de la semilla del aguacate (Persea americana Mill. Var Hass) a escala laboratorio [Internet]. Fundación Universidad de América; 2019 Sep 12 [consultado 25 Mar 2025]. Disponible en: http://hdl.handle.net/20.500.11839/7709
Downloads
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.